CCTP

CCTP_Annexe 5_20S082-09-10-11.pdf · 3 655 mots · du marché « Surveillance de la qualité des masses d'eau (plans d'eau) du bassin Loire-Bretagne : prélèvements d'eaux, analyses… », dossier de consultation officiel.

Développement d’un Indice
Contacts :

Nicolas Dedieu
Laboratoire Chrono-environnement
- UMR 6249 CNRS-UFC Macroinvertébrés Lacustres DCE
Université de Franche Comté
16 Route de Gray, 25000 Besançon
nicolas.dedieu@univ-fcomte.fr
Français
0381665710
Appui scientifique à la Mise en œuvre de la Directrice Cadre
Européenne sur l’Eau 2017-2020

[ND1]

ANNEXE TECHNIQUE : PROTOCOLE TEST

Jean Marc Baudouin Nicolas Dedieu1 & Valérie Verneaux1
Centre Irstea d’Aix-en-Provence
Unité « Risques, Ecosystèmes,
Vulnérabilité, Environnement, Novembre 2017
Résilience » (RECOVER)
3275 route de Cézanne – CS 40061
1
– 13182 Aix-en-Provence Cedex 5 Université de Franche-Comté, Laboratoire Chrono-environnement -
Jean-marc.baudoin@afbiodiversite.fr
0442666970 UMR 6249 CNRS-UFC
Table des matières
GLOSSAIRE.......................................................................................................................................... 4
AVANT-PROPOS ................................................................................................................................. 4
I. DOMAINE D’APPLICATION .................................................................................................... 4
1.1- Type de masse d’eau visée ........................................................................................................... 4
1.2- Période des prélèvements ............................................................................................................. 4
II. MATERIEL DE PRELEVEMENT ............................................................................................. 5
2.1- Appareil de prélèvement de type troubleau ................................................................................. 5
2.2- Embarcation ................................................................................................................................. 5
2.3- Appareil de géoréférencement ..................................................................................................... 5
2.4 – Matériels divers de terrain .......................................................................................................... 5
2.5- Matériels pour le conditionnement et la conservation des macroinvertébrés .............................. 5
2.6- Autorisation et règles en vigueur sur le site ................................................................................. 5
2.7- Information sur le cycle hydrologique du site.............................................................................. 5
III. PRINCIPE DU PROTOCOLE D’ECHANTILLONNAGE .................................................. 5
3.1- Préalablement au terrain............................................................................................................... 5
3.2- Sur le terrain ................................................................................................................................. 5
3.3- Laboratoire ................................................................................................................................... 5
IV. ETAPES PREALABLES AUX PRELEVEMENTS .............................................................. 5
4.1. Base de données Charli ................................................................................................................ 5
4.2. Elaboration du plan d’échantillonnage : ....................................................................................... 5
4.2.1- Simplification des substrats : ................................................................................................ 6
4.2.2- Calcul des pourcentages de recouvrement : .......................................................................... 6
4.2.3- Sélection des points d’échantillonnage ................................................................................. 6
4.2.4- Edition d’une carte : .............................................................................................................. 7
4.2.5- Géoréférencement des échantillons :..................................................................................... 7
V. ECHANTILLONNAGE SUR LE TERRAIN ............................................................................. 7
5.1. Prélèvements ................................................................................................................................ 7
5.1.1- Echantillonnage troubleau :................................................................................................... 7
5.1.2- Prélèvements des substrats végétaux : .................................................................................. 7
5.1.3- Surface d’un point d’échantillonnage ................................................................................... 8
5.1.4- Profondeur de prélèvement : ................................................................................................. 8
5.1.5.- Remplir la feuille de terrain ................................................................................................. 8
5.2- Difficulté de réalisation du plan d’échantillonnage et recommandations .................................... 8
5.2.1- Beine lacustre fortement développée .................................................................................... 8
5.2.2- Incohérences Charli/Terrain .................................................................................................. 8
VI. LABORATOIRE ..................................................................................................................... 10
6.1- Matériel de laboratoire ............................................................................................................... 10
6.2- Taxons considérés et niveau de détermination........................................................................... 10
6.3- Lavage et tri des échantillons ..................................................................................................... 11
6.3.a- Pré-détermination : .............................................................................................................. 11
6.3.b- Estimation des abondances des taxons de « type B » ......................................................... 11
6.4- Dénombrement des individus..................................................................................................... 11
6.5- Dénombrement des Chironomidae............................................................................................. 11
VII. CONLUSION ........................................................................................................................... 12
VIII- BIBLIOGRAPHIE .................................................................................................................. 12
GLOSSAIRE

Beine : Fond lacustre de faible pente le plus proche de la rive, de largeur variable
CharLi : Caractérisation des habitats des rives et du littoral des plans d’eau,
Echantillon : Substrat prélevé sur le terrain et manipulé en laboratoire,
Elutriation : Séparation de la fraction organique (fraction surnageant) et de la fraction minérale (refus
d’élutriation) selon leur densité par agitation.
Habitat : Combinaison d’un substrat et d’une profondeur,
IMLL : Indice Macroinvertébrés Littoral Lacustre,
Site : Lac,
Station : Point d’échantillonnage, point de prélèvement,
Taxon : Unité systématique de détermination

AVANT-PROPOS

Le protocole test d’échantillonnage de la faune macroinvertébrés littorale lacustre doit permettre
d’étudier les relations pressions hydromorphologiques/peuplements tels que le marnage non intrinsèque,
les modifications morphologiques des berges et/ou les perturbations physiques, morphologiques et
chimiques des habitats littoraux.

Le but du présent guide est de présenter un protocole test de prélèvement des macroinvertébrés
littoraux des plans d’eau naturels et artificiels de grande taille. Ce guide comprend les phases
d’élaboration du plan d’échantillonnage, de prélèvements sur le terrain ainsi que le travail de laboratoire.
Les phases ultérieures de calculs d’indices n’entrent pas dans le champ de ce protocole.

Cette présente méthode a été développée pour un usage en France métropolitaine. Cependant, son
application est possible sur d'autres territoires présentant les mêmes types de masse d’eau à condition
que les connaissances sur la faune macro-invertébrée soient assez avancées.

I. DOMAINE D’APPLICATION

1.1- Type de masse d’eau visée : Ce protocole expérimental spécifie une méthode d’échantillonnage
pour les grands plans d’eaux naturels et artificiels pris en compte dans le cadre de la surveillance DCE.
Il est développé pour la zone littorale lacustre hors fluctuations mineures de niveaux et hors influence
majeure de la houle (profondeur ≥ 50 cm) et hors de la zone d’influence majeure du batillage ou des
vents, zone très variable selon les lacs (Brodersen, 1995 ; Scheifhacken et al., 2007). Ce protocole ne
s’applique pas aux écosystèmes aquatiques stagnants ne présentant qu’une zone euphotique (profondeur
trop faible : petits étangs, zones humides) ni aux écosystèmes saumâtres (lagune).

1.2- Période des prélèvements : Les prélèvements doivent être effectués pendant la période de turn-over
printanier (période variable selon l’altitude de l’hydrosystème) avant les émergences massives des
imagos d’insectes.

Ce protocole est développé pour la zone littorale lacustre hors fluctuations mineures des niveaux
II. MATERIEL DE PRELEVEMENT

2.1- Appareil de prélèvement de type troubleau : Le prélèvement des échantillons se réalise à l’aide d’un
filet troubleau de 300 µm de vide de maille et d’une largeur de base de 25 cm. Cet appareil est équipé
d’un manche de 1m pouvant être complété d’une rallonge de 1m afin de permettre d’échantillonner les
substrats les plus profonds.

2.2- Embarcation : Une embarcation à fond plat est indispensable afin de réaliser l’échantillonnage. Un
moteur électrique à arbre court ou réglable en hauteur est fortement conseillé.

2.3- Appareil de géoréférencement : Un GPS de terrain (ou échosondeur avec GPS) est nécessaire afin
de s’orienter sur le site et d’accéder directement aux points de prélèvements (préalablement enregistrés).

2.4 – Matériels divers de terrain : Fiche site (Annexe I), carte, matériel d’estimation de profondeur,
appareil photo.

2.5- Matériels pour le conditionnement et la conservation des macroinvertébrés : Les échantillons
peuvent être conditionnés dans des sacs plastiques doublés ou des bidons en plastique d’un litre. Les
échantillons sont conservés à l’éthanol 95% à raison d’ 1 volume d’éthanol / 1 volume d’échantillon.

2.6- Autorisation et règles en vigueur sur le site : Il revient à l’opérateur de se renseigner et de respecter
les règles en vigueur sur le site (ex. : utilisation ou non de moteur thermique, zones littorales interdites
d’accès, faune/flore protégées…).

2.7- Information sur le cycle hydrologique du site : L’opérateur doit se renseigner auprès des
gestionnaires à propos de la situation hydrologique du site (cote du lac au moment de l’échantillonnage
et suivi annuel des niveaux d’eau (suivi de fréquence mensuelle). Ces informations seront essentielles
pour le calcul de l’IMLL.

III. PRINCIPE DU PROTOCOLE D’ECHANTILLONNAGE

Le protocole se déroule en 3 étapes :

3.1- Préalablement au terrain : L’établissement du plan d’échantillonnage. Cette partie est
essentiellement basée sur un travail de cartographie et de géoréférencement. Il s’agit de sélectionner les
points de prélèvements et de les enregistrer sur le GPS de terrain.

3.2- Sur le terrain : Réaliser 15 prélèvements préalablement choisis, les conditionner séparément les uns
des autres.

3.3- Laboratoire : Tri et identification de la faune, expression des résultats sous la forme d’une liste
faunistique par point d’échantillonnage.

IV. ETAPES PREALABLES AUX PRELEVEMENTS

4.1. Base de données Charli : Les fichiers extraits de la base de données Charli nécessaires à
l’établissement du plan d’échantillonnage seront fournies par l’AFB (contact J.M. Baudoin).
4.2. Elaboration du plan d’échantillonnage :
4.2.1- Simplification des substrats : Afin de standardiser et d’harmoniser le protocole, certains substrats
présents dans la description Charli n’ont pas été retenus. Ainsi, les substrats : végétation surplombante
–branchages- ligneux émergés-ligneux morts- chevelu racinaire- ne sont pas considérés pour
l’échantillonnage des macroinvertébrés. L’échantillonnage concerne, après simplification de la
description des habitats CHARLI, 5 substrats minéraux et 5 substrats végétaux (Tableau 1).

Tableau 1 : Substrats lacustres littoraux pris en compte dans le protocole et substrats à soustraire pour
le calcul des % de recouvrement

Substrat minéral
pris en compte à soustraire
VA Vase ( < 2µm)
SL Sable, Limon (2 - 2mm)
GR Graviers (2mm - 2 cm)
GA Galets (2cm - 20cm)
BD Blocs (> 20cm) & Dalles
Habitat végétal/combinaison de substrats
pris en compte
He Hélophytes Végétation surplombante
Li Litière ou débris organiques grossiers Ligneux émergés
HF Hydrophytes flottantes Branchages
Hi Hydrophytes immergées Ligneux morts
Br Bryophytes Chevelu racinaire

4.2.2- Calcul des pourcentages de recouvrement : Le pourcentage de recouvrement d’un substrat
correspond à la « longueur du substrat observé » (pour « Blocs et Dalles » sommer les longueurs des 2
substrats) divisée par la « longueur de linéaire total observé diminué de la longueur des substrats non
pris en compte » dans le cadre du protocole Charli multiplié par « 100 ».

4.2.3- Sélection des points d’échantillonnage : L’opérateur doit définir 15 prélèvements sur la base des
pourcentages de recouvrement des différents substrats et en suivant plusieurs règles :

Les substrats dont le pourcentage de recouvrement (%rec.) est inférieur à 5% ne sont pas pris
en compte dans ce protocole,

Pour les substrats avec un pourcentage de recouvrement (%rec.) supérieur à 5%, le nombre
d’échantillons à prélever (n) sur chaque substrat est calculé au prorata de ce pourcentage :

n = 15 x %rec.
Les nombres entiers (n) obtenus correspondent aux nombres d’échantillons (exemple Tableau
2),
Pour les nombres décimaux non entiers :

- Arrondir à l’entier le plus proche,

- Pour les demis : arrondir à l’entier supérieur pour les substrats dominants (%rec ≥ 20%) et à
l’entier inférieur pour les substrats dits marginaux (%rec ≤ 20%) (exemple Tableau 2),

Tableau 2 : Exemple d’estimation du nombre d’échantillons dans un site

Type de
% recouvrement Calcul
substrat Nombre d'échantillons
Sup
SL 30 15 * 0,3 = 4,5 5
GR 20 15 * 0,2 = 3 3
GA 5 15 * 0,05 = 0,75 1
HF/SL 15 15 * 0,15 = 2,25 2
HE/SL 10 15 * 0,1 = 1,5Inf 1
LI/SL 15 15 * 0,15 = 2,25 2
BD 5 15 * 0,05 = 0,75 1
Sup
Substrat dominant = arrondissement à l’entier supérieur,
Inf
Substrat marginal = arrondissement à l’entier inférieur.

4.2.4- Edition d’une carte : L’opérateur doit placer les 15 substrats retenus sur une carte en utilisant les
données géoréférencées Charli du site. Le choix des emplacements est également fait selon les critères
spatiaux suivants :

Choisir des zones où les différents substrats sont les mieux représentés ou les plus denses, afin
d’obtenir des échantillons de substrats les plus homogènes possibles.
Changer de zone pour positionner les réplicas d’un même substrat afin d’avoir une couverture
optimale du lac.

4.2.5- Géoréférencement des échantillons : Les coordonnées GPS de chaque point de prélèvement sont
enregistrées dans un GPS portable afin de s’orienter sur le site et d’accéder directement aux points de
prélèvements.

V. ECHANTILLONNAGE SUR LE TERRAIN

Le prélèvement est réalisé depuis l’embarcation dans l’ordre de proximité spatiale des points
d’échantillonnage.

5.1. Prélèvements

5.1.1- Echantillonnage troubleau : La méthode consiste à ramener par des mouvements d’aller-retour
une partie du substrat dans le filet. 3 balayages sont réalisés sur chaque point. (Un balayage = 1 longueur
de 40 cm. Ainsi, le premier passage met en suspension la faune présente sur ou dans le substrat et les
deux autres permettent de la collecter. Tous les substrats minéraux (Tableau 2) sont prélevés de cette
même façon.

5.1.2- Prélèvements des substrats végétaux : Le balayage des hélophytes et des hydrophytes flottantes
est fait au niveau de leur base. Les hydrophytes immergées sont balayées dans la masse de végétation.
5.1.3- Surface d’un point d’échantillonnage : Surface fixe de 0.1 m² (Largeur du troubleau (25 cm) x
longueur du balayage (40cm)).

5.1.4- Profondeur de prélèvement : Entre 50 et 100 cm de profondeur mais un échantillon peut être
effectué en dehors de cette gamme de valeur sous certaines conditions (5.2.2).

5.1.5.- Remplir la feuille de terrain (Annexe I) : Il est essentiel pour chaque point de renseigner les
informations suivantes : type de substrat, profondeur du prélèvement, coordonnées GPS. Il est
également important de renseigner des problèmes éventuellement rencontrés (Tableau 3) et les
informations sur la situation hydrologique du site (2.7).

5.2- Difficulté de réalisation du plan d’échantillonnage et recommandations

5.2.1- Beine lacustre fortement développée (ex : Lac landais) : Les prélèvements doivent être effectués
dans la zone littorale des 10 mètres (zone d’application du protocole Charli). Cela peut éventuellement
entrainer des problèmes d’accès selon l’embarcation choisie (tirant d’eau). Une embarcation à faible
tirant d’eau est fortement recommandée.

5.2.2- Incohérences Charli/Terrain : Il peut arriver de remarquer des incohérences entre les prévisions
des points d’échantillonnage à partir des données Charli et les observations sur le terrain. Deux types
d’événements sont possibles (Tableau 3)
Tableau 3 : Evènement pouvant entrainer une incohérence avec le protocole Charli.

Evènement Possible cas rencontré Recommandations

Substrat dominant : Le substrat initialement prévu est prélevé dans une autre zone du lac.
a. Absence du substrat prévu
dans la zone Substrat peu fréquent sur le pourtour du lac (d’après la cartographie issue de Charli): Substitution par le substrat
dominant en place de façon :

b.Le substrat prévu n’est pas - définitive si le substrat initialement prévu n’est pas rencontré ailleurs, ou
présent dans la gamme de
Ponctuel profondeur (50 – 100 cm)
- provisoire, si le substrat initialement prévu est rencontré. Dans ce cas rejeter le prélèvement de substitution et
le remplacer par un prélèvement de substrat initialement prévu.

c.Zone non-accessible (ex:
chute d'arbres, nouveau statut Changer de zone puis appliquer les recommandations ci-dessus
(berge protégée, privée...).

Le lac n'est pas en cote
moyenne d'exploitation L'opérateur réévalue les pourcentages de recouvrement visuellement et rétablit son protocole d’échantillonnage
(condition de réalisation de (sélection de nouveaux substrats)
Charli)

Global

Les végétaux ne sont pas Prélever tout de même le substrat sur la zone. Les végétaux ont une influence tout au long de l’année sur le
encore bien développés substrat basal et également lorsqu'ils sont peu développés (système racinaire)
VI. LABORATOIRE

6.1- Matériel de laboratoire : Colonne de tamis (500 µm, 3mm), bassines ou bacs de tri, coupelles ou
boites de pétri (Ø = 10 cm), loupe binoculaire (grossissement x60, x80), compteurs manuels, piluliers,
pinces fines, lames et lamelles, liquide de montage (Aquatex), HCl (10%), KOH (10% masse/volume),
éthanol 95%, microscope (objectifs conseillés X4, X10, X40, X100 immersion).

6.2- Taxons considérés et niveau de détermination : L’ensemble des taxons composant la faune
macroinvertébrés benthique sont considérés à l’exception des Oligochètes non pris en compte dans la
méthode. Le niveau de détermination requis pour la grande majorité des taxons est le genre (Tableau 4).
L’ouvrage de base pour la détermination est le guide « Invertébrés d’eau douce – Systématique, biologie,
écologie » (Tachet et al., 2010 et le site Perla DREAL Auvergne-Rhône Alpes
http://www.perla.developpement-durable.gouv.fr). La détermination se fera au niveau requis, sauf pour
les individus trop abîmés ou immatures, qui seront identifiés à la famille ou placés dans un groupe non
identifiable.

Tableau 4: Niveaux d’identification requis pour les différents groupes taxonomiques

TAXONS NIVEAU SYSTÉMATIQUE
Plécoptères Genre
Ephéméroptères Genre
Trichoptères (sauf Limnephilidae) Genre
Genre/Sous-famille /Tribu
Trichoptères - Limnephilidae
selon Tachet et al.2010
Coléoptères Genre
Mégaloptères Genre
Hétéroptères Genre
Odonates Genre
Lépidoptères Famille
Diptères (exceptés Chironomidae) Famille
Diptères - Chironomidae Genre
Crustacés Genre
Mollusques Genre
Hirudinés Genre
Plathelminthes Turbellariés Genre
Hydracariens Sous-cohorte
Bryozoaires Embranchement
Nematodes Embranchement
Gordiacés Classe
Hydrozoaires Classe
Porifères Embranchement
Némertiens Embranchement

La détermination générique des Chironomidae nécessite une observation des capsules céphaliques à
l’aide d’un microscope. Une clef de détermination en français des genres répertoriés en France est mise
à disposition (contacter : nicolas.dedieu@univ-fcomte.fr). Cette clef est une compilation des différents
ouvrages de référence existants sur les Chironomidae (Brooks et al., 2007 ; Epler, 2001 ;
Wiederholm,1983) et des dernières listes de la faune chironomidienne française (Moubayed-Breil, 2007
; Moubayed-Breil et Ashe, 2016).

6.3- Lavage et tri des échantillons : Chaque échantillon est vidé sur la colonne de tamis (3mm et 500
µm) et rincé à l’aide d’une douchette. Les refus de tamis les plus grossiers (3mm) sont placés dans des
bacs de tri et sont triés à vue (ou à l’aide d’une loupe annulaire). Le refus de tamis de 500 µm est trié
sous loupe binoculaire en transférant de petites quantité de substrat dans une coupelle striée (espacement
des stries = diamètre du champ d’observation).

Pour les échantillons constitués majoritairement de substrats minéraux une élutriation est conseillée. La
fraction la moins dense (en suspension) est déversée sur la colonne de tamis. Un minimum de 3 phases
d’agitation de l’échantillon est conseillé lors de l’élutriation. En fin d’élutriation, la fraction la plus dense
(déposée) est mise en attente et sera triée à vue afin de rechercher certains taxons difficilement mis en
suspension (Mollusques, Trichoptères à fourreau…).

6.3.a- Pré-détermination : Lors du tri des échantillons, deux « types » de cas peuvent être rencontrés
(AFNOR, 2009) :

« Taxon A » correspondant aux taxons différenciés de manière certaine par l’opérateur au cours
du tri aux niveaux systématiques requis dans le cadre du protocole (Tableau 4) (ex. : Ephemera,
Caenis, Hydracarien..). Pour chaque échantillon, une dizaine d’individus de chaque taxon de
type A sont extraits puis conservés dans des piluliers avec de l’éthanol (70° min). Le reste des
individus est identifié et compté directement au cours du tri.

« Taxon B » correspondants aux taxons non différentiables au niveau systématique requis par
l’opérateur pendant le tri (ex .: Baetidae, Ordre des Trichoptères..). Tous les individus doivent
être extraits pour être identifiés ultérieurement. Ils seront ensuite conservés dans des piluliers
avec de l’éthanol (70° min).

6.3.b- Estimation des abondances des taxons de « type B » : Selon le nombre d’individus, un sous-
échantillonnage peut être réalisé pour gagner du temps. Cela ne s’applique pas aux taxons de type A car
ils peuvent être comptés sans forcément être extraits.
Pour les taxons à faible effectif dans l’échantillon (< 200 individus), tous les individus de tous
les refus de tamis sont extraits et placés dans un pilulier avec de l’éthanol (70° min.).
Pour les taxons présentant des effectifs dans l’échantillon supérieur à 200, un sous-
échantillonnage est possible. Pour chaque refus de tamis (en cas de tri à vue) et chaque coupelle
de tri (tri sous loupe binoculaire) bien noter la fraction d’échantillon dont les individus sont
extraits. Une fraction minimale de ¼ est conseillée.
6.4- Dénombrement des individus : Excepté pour les Chironomidae, tous les individus extraits (Taxon
B) sont déterminés. Si un sous-échantillonnage a été effectué lors de la phase de tri les proportions des
différents genres d’une même famille sont reportées sur les effectifs totaux évalués. Le dénombrement
final correspond à une densité d’individus par 0.1 m².

6.5- Dénombrement des Chironomidae : Pour les Chironomidae, un maximum de 50 individus par
échantillon est identifié. Si la totalité des individus de Chironomidae de l’échantillon est inférieure ou
égale à 50 tous les individus sont montés entre lame et lamelle et sont identifiés au genre sous
microscope.
Si la totalité des individus extraits de l’échantillon est supérieure à 50 ils sont vidés dans une coupelle,
répartis de manière homogène par agitation légère de la coupelle, et les 50 premiers individus de la
coupelle seront identifiés au genre après montage entre lame et lamelle. La proportion des différents
genres sera reportée à l’évaluation (en cas de sous-échantillonnage en phase de tri) ou au comptage (sans
sous-échantillonnage en phase de tri) des effectifs totaux de Chironomidae de l’échantillon.

VII. CONLUSION
Au total, le traitement d’un site pour 15 échantillons est estimé à 8/9 jours (Tableau 5). Un fichier
excel type est fourni afin d’harmoniser l’ensemble des données.

Tableau 5 : Estimation du temps nécessaire pour traiter un site (pour 15 échantillons)

Préparation Terrain Laboratoire tri et identification Base de
Total
terrain données

Taxa Chironomidae
autres
1/2 1/2 montage identification 1/2 8.5

6 1/2 1/2

VIII- BIBLIOGRAPHIE

AFNOR T95F. (2009). Traitement au laboratoire d’échantillons contenant des macro-invertébrés
aquatiques continentaux. Rapport de l’Association Française de Normalisation.

AQEM Consortium. (2002). Manual for the application of the AQEM system. A comprehensive
method to assess European streams using benthic macroinvertebrates, developed for the purpose of the
Water Framework Directive. Version, 1.

Alleaume, S., C. Heyd, C. Lanoiselée, Argillier C. (2014). CHARLi : Protocole de caractérisation
des habitats des rives et du littoral. Aix en Provence, Irstea: 30p.

Brodersen, K.P. (1995). The effect of wind exposure and filamentous algae on the distribution of
surf zone macroinvertebrates in Lake Esrom, Denmark. Hydrobiologia 297: 131.

Brooks, J., Langdon, P.G., Heiri, O. (2007). The Identification and Use of Palearctic Chironomidae
Larvae in Palaeoecology. QRA Technical Guide No. 10, Quaternary Research Association, London,
U.K. 276 p.

Epler. J.H. (2001). Identification manual for the larval Chironomidae (Diptera) of North and South
Carolina Archived 2005-12-14 at the Wayback Machine. North Carolina Department of Environment
and Natural Resources.

Moubayed-Breil, J. (2007). Non-biting midges from Continental France : new records, faunal and
biogeographical outline (Diptera, Chironomidae) Ephemera, 2008 (2007), Vol. 9 (1): 17-32.
Moubayed-Breil, J., Ashe, P. (2016). New records and additions to the database on the geographical
distribution of some threatened chironomid species from continental France [Diptera, Chironomidae].
Ephemera, Vol. 16 (2): 121-136

Scheifhacken, N., Fiek, C., & Rothhaupt, K. O. (2007). Complex spatial and temporal patterns of
littoral benthic communities interacting with water level fluctuations and wind exposure in the littoral
zone of a large lake. Fundamental and Applied Limnology/Archiv für Hydrobiologie, 169(2), 115-129.

Tachet, H., Richoux, P., Bournaud, M., & Usseglio-Polatera, P. (2010). Invertébrés d'eau douce:
systématique, biologie, écologie(Vol. 15). Paris: CNRS editions.

Wiederholm T. (1983) Chironomidae of the Holarctic region – keys and diagnoses. Part 1. Larvae.
Entomologica Scandinavica Supplement, 19, 1–457.
ANNEXE I. Exemple de feuille de terrain utilisée lors de la campagne test

Nom du site : Date :
Opérateur: Code Station :
BL/DA = Bloc & Dalle ; GA = Galet ; GR = Gravier; SL = Sable ; VA = Vase ; HF = Hydrophyte flottante ; HI = Hydrophyte immergé ; HE = Hélophyte ; LI = Litière
Coordonnées
Echantillon Substrat Profondeur Point GPS Commentaires
X Y

Commentaires / Observations
Observation de la cote actuelle (ex.: Niveau d'eau,NgF, marque au niveau du substrat (débris végétaux, zone
humide, …)ou des arbres, présence de laisses et/ou une absence de végétation pérenn e).

Observations prévision Charli/Terrain

Commentaires divers

Texte extrait tel quel de la pièce officielle, qui seule fait foi. La mise en page du document d'origine peut différer.